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Revista Digital del Centro
Nacional de Investigaciones Agropecuarias de
Venezuela |
HELMINTOSIS GASTROINTESTINAL DE LOS BOVINOS EN VENEZUELA Gustavo
Morales1; Luz
A. Pino1; Espartaco
Sandoval2; Delia Jiménez3 1Instituto
Nacional de Investigaciones Agrícolas | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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La
helmintosis gastrointestinal es una afección parasitaria debida a la
presencia en el abomaso, intestino delgado e intestino grueso de nematodos
pertenecientes a diversas familias que ocasionan trastornos
gastrointestinales como diarreas, caquexia y anemia. Generalmente, los
agentes patógenos responsables son trasmitidos por el alimento en este
caso los pastos, o a través del agua de bebida y en algunos casos muy
específicos mediante penetración transcutánea (Strongyloides
papillosus, Bunostomum phlebotomum) o a través del calostro (Toxocara
vitolorum). Las
parasitosis gastrointestinales inciden negativa y constantemente sobre la
producción y productividad de los rebaños reduciendo el consumo de
alimentos, retardando el crecimiento, disminuyendo la producción de carne
y leche, disminuyendo la eficiencia reproductiva e incrementando la
mortalidad, sobre todo en animales jóvenes (Hansen y Perry, 1994; Ordóñez,
1989; Fuentes et al., 1990). Distintos organismos internacionales
como FAO – OIE– WHO consideran a las infestaciones helmínticas como
causa principal de las pérdidas económicas en la producción ganadera
(Moreno, 1996). Al
realizar la necropsia helmintológica en bovinos criados a pastoreo es
frecuente encontrar en un mismo individuo infestaciones pluriespecíficas
(Moreno et al., 1985, 1996; Morales et al.,1995, 1997,
2001), en consecuencia, definimos parasitismo como una asociación
compuesta por la especie hospedadora y la comunidad parasitaria que
alberga (Morales et al., 1996), ya que las infestaciones monoespecíficas
son muy raras y generalmente se observan bajo condiciones controladas de
laboratorio. Otra
característica de las poblaciones parasitarias es que se encuentran sobre
dispersadas en el seno de la población de hospedadores. Es decir, al
interior del rebaño sólo unos pocos albergan las mayores cargas
parasitarias y son los que constituyen la fracción de animales
acumuladores de parásitos (Morales et al.,
1998,
2001). Esto limita el uso de la prevalencia observada para estimar
la intensidad de la infección, debido a la no existencia de una relación
lineal entre ambas variables, aunque no le resta importancia como
información epidemiológica por su relación dependiente con la fracción
de animales
acumuladores de parásitos al interior del rebaño y debido a que
el porcentaje de animales infestados se incrementa cuando el porcentaje de
bovinos con infecciones severas aumente (Morales et al., 2001). En
Venezuela las especies más importantes tanto por su prevalencia como por
sus cargas y amplia distribución, pertenecen en su gran mayoría al orden
Strongylida, aunque otros órdenes también son importantes aunque básicamente
limitados a los primeros seis meses de vida, como son el orden Ascarida (Toxocara
vitolorum) y Rhaditida (Strongyloides papillosus). Dentro
del orden Strongylida presente en nuestro país, tenemos básicamente a
las siguientes especies (Moreno et al.,1980; Morales et al.,
1996): Haemonchus similis, Haemonchus placei, Mecistocirrus digitatus,
Ostertagia Ostertagi, Trichostrongylus axei, Trichostrongylus
colubriformis, Cooperia punctata, Cooperia pectinata (familia Trichostrongylidae).
Las especies Bunostomum phlebotomum y Agriostomum vriburgi (familia
Ancylostomatidae), Oesophagostomum radiatum (familia
Strongylidae). Los
otros nematodos reportados en el país son
Trichuris bovis y Capillaria bovis (familia Trichuridae),
Strongyloides papillosus (familia Rhadditidae) y Toxocara
vitolorum. (familia Ascarididae). En
general, los ciclos de los nematodos Strongylida son muy similares y son
de tipo directo, es decir, no requieren de otros animales para completar
su ciclo de vida. Esto, con su diseminación a través de huevos provistos
de cáscara resistente a las condiciones adversas del medio exterior así
como de larvas infestantes provistas de una doble cutícula y reservas
alimenticias acumuladas durante las etapas preinfestantes que favorecen
su capacidad de sobrevivencia en el medio exterior, unido al intercambio
comercial de sus hospedadores, ha favorecido la distribución cosmopolita
de estos parásitos (Hansen y Perry, 1994). En
el caso de Toxocara vitolorum, este parásito afecta solamente a
becerros menores de seis meses (los cuales se infectan al ingerir el
calostro o la leche de
sus madres) y ocasiona en los animales afectados cuadros neumónicos por
la migración larvaria a través de los pulmones, además de diarrea,
anemia, enflaquecimiento progresivo, cólicos e incluso perforación
intestinal. En Strongyloides papillosus, solamente las hembras son
parásitas y la forma infestante penetra a través de la piel y al igual
que en el caso de Toxocara vitolorum es un parásito autolimitado
por la edad del hospedador. De ahí que sea encontrado básicamente en
animales menores de seis meses. En los parásitos del orden Trichurida, la
forma larvaria infectante se encuentra dentro del huevo y es liberada
cuando éste es ingerido por el hospedador (Graber y Perrotin, 1983). Las
infestaciones ocasionan trastornos gastrointestinales y anemia básicamente,
dependiendo la intensidad de las lesiones de la o las especies parásitas
involucradas y de la cantidad de los mismos. Las parasitosis
gastrointestinales son más frecuentes en animales jóvenes, generalmente
hasta los dos años de edad. Sin embargo, los adultos no están exentos de
sufrir una fuerte parasitosis ya que especies como Haemonchus similis,
H. placei y Mecistocirrus digitatus son frecuentemente
encontrados en animales adultos sacrificados en los mataderos (Morales et
al., 1997). Las especies de Cooperia, aunque se requieren elevadas
cargas (>10.000), ocasionan exudación mucosa y engrosamiento de la
pared del intestino delgado, con presencia de petequias, así como pérdida
de plasma y potasio a través del intestino (Dunn, 1978; Bremer, 1982;
Urquhart et al., 1999). En
los parásitos abomasales, la anemia es un síntoma clínico de
importancia, variando esta anemia de acuerdo a la o las especies
presentes. Así tenemos que la misma es menos intensa en los casos a
infestaciones dominadas por Trichostrongylus axei, que en los casos
debidos a parásitos del género Haemonchus o Mecistocirrus. Un
signo clínico frecuente, como lo es el edema submaxilar, se encuentra
asociado tanto a las especies parásitas que se localizan en el abomaso así
como a la de otras especies hematófagas, básicamente Bunostomum phlebotomun
y a trematodos como Fasciola hepatica. Uno de los trastornos
digestivos más comunes es la diarrea, la cual puede ser sanguinolenta
como la ocasionada por Strongyloides y alternarse con periodos de estreñimiento
como en Haemonchus, o ser muy intensa como la ocasionada por
especies del género Oesophagostomum, cuyas larvas, en cada punto
de entrada de la submucosa, ocasionan una reacción del tejido que
conlleva a la formación de nódulos, envolventes para la larva, y, además
de los trastornos fisiológicos inherentes, también ocasionan pérdidas
económicas directas al inutilizar el uso del intestino para la preparación
de embutidos. Los otros signos clínicos que nos hacen sospechar de una
parasitosis son: anorexia, pérdida progresiva de peso, debilidad, pelaje
áspero, vientre abultado, deshidratación. Se pueden observar también
cuadros neumónicos, como los ocasionados por las larvas de Toxocara
vitolorum y de Strongyloides papillosus durante su migración a
través de los pulmones, lesiones dermatológicas debidas a la penetración
transcutánea de las larvas de Strongyloides papillosus, básicamente
a nivel podal. En
vista de que la mayoría de los helmintos liberan sus huevos en el ámbito
intestinal, el diagnóstico de las infestaciones parasitarias puede ser
confirmado por la puesta en evidencia de dichas formas de diseminación,
mediante el examen de una pequeña cantidad de heces, lo cual constituye
la coprología microscópica, cuyas técnicas son en general muy sencillas
pero requieren de rigurosidad para evitar la emisión de resultados
falsos. Es recomendable tomar la materia fecal directamente del recto del
animal, para lo cual son de gran utilidad los guantes plásticos para
palpaciones rectales o una simple bolsa plástica invertida colocada a
manera de guante en la mano. Las muestras deben ser adecuadamente
identificadas y colocadas en cavas de anime con recipientes refrigerantes
congelados para su traslado al laboratorio en donde deben ser procesadas a
la brevedad posible (<48 horas). En caso de no ser factible su
procesamiento inmediato deben mantenerse bajo refrigeración (4ºC). El análisis
coproscópico cuantitativo, a pesar de sus limitaciones, continúa siendo
la herramienta fundamental en el diagnóstico de la helmintosis
gastrointestinal de los bovinos, debido a su practicidad y bajo costo
(Moreno, 1996). Existen variadas técnicas coproscópicas cuantitativas,
pero las de uso más frecuentes tanto en laboratorios de investigación
como de servicio son las siguientes (Morales et al., 2004): Esta
técnica requiere de una cámara -conocida como cámara de McMaster-
especialmente diseñada para el conteo de los huevos y de un líquido de
flotación, como la solución sobresaturada de NaCl (400 g de sal de
cocina + 1000 ml de agua), o la solución de Sheater azúcar (350 g de azúcar
+ 340 ml de agua) cuyas densidades oscilan entre 1,18 a 1,20. Para estimar
el número de huevos por gramo de heces, simplemente cada huevo observado
dentro o sobre las líneas de demarcación se multiplica por 50. (Morales
y Pino, 1977, 2004; Hansen y Perry, 1994). Esta
técnica es de gran utilidad en infestaciones leves, lo cual es frecuente
en bovinos adultos y tiene la ventaja de que, como se lee al microscopio
entre lamina y laminilla, los huevos de los parásitos se pueden observar
con mayor nitidez. Es una técnica de sedimentación – flotación. En la
primera etapa se mezclan 5 gramos de heces en 30 ml de agua, se tamiza la
mezcla y se distribuye el contenido en 2 tubos de ensayo de capacidad para
15 ml y se centrífuga a 800 rpm durante 10 minutos, luego se descarta el
sobrenadante y se le añade la solución azucarada hasta 2/3 de la
capacidad de los tubos, se mezcla bien y se completa con dicha solución
garantizando la formación de un menisco convexo superior. Se le coloca
una laminilla de 22x22 mm sobre los tubos de centrífuga y se repite la
centrifugación a 800 rpm por 10 minutos, se toman estas laminillas y se
colocan sobre láminas portaobjetos para su observación al microscopio a
10x. El total de huevos observados se divide entre 5 y así obtenemos la
cantidad de huevos por gramo de heces. El
examen post-mortem constituye el método más preciso para el diagnóstico
de las helmintosis de los rumiantes (Hansen y Perry, 1994; Moreno, 1996)
ya que la infestación helmíntica puede ser evaluada de una forma directa
mediante el aislamiento, identificación y cuantificación de las
diferentes especies parásitas sobre animales recién muertos o
sacrificados para tales fines. Es
muy importante que la necropsia parasitaria sea practicada lo más rápido
posible posterior a la muerte del animal, con la finalidad de evitar la
destrucción de los parásitos. La necropsia y procesamiento en el
laboratorio o en el campo de animales parasitados, brindará
información precisa no sólo de las especies y cargas de cada una
de ellas, sino también del estado de desarrollo de las poblaciones
parasitarias presentes (Fiel et al., 1999). La información sobre
la metodología más adecuada para la realización de una necropsia con
fines de diagnóstico helmintológico, aparece detallada en varias
publicaciones, entre las cuales nos permitimos citar y recomendar las
elaboradas por los siguientes autores: Skerman y Hillard (1966); Morales y
Pino (1977); Urquhart et al. (1999); Fiel et al. (1999);
Hansen y Perry (1994) y
Euzeby (1982). Los
antihelmínticos más frecuentemente usados en ganadería bovina son los
siguientes (Carrillo, 2002; Graber y Perrotin, 1983): Sales
de Piperazina, Dietilcarbamazina. La
piperazina es una droga ampliamente usada contra los ascáridos mientras
que la dietilcarbamazina ha sido empleada contra nematodos pulmonares y
filarias. Levamisol
y Tetramisol / Morantel, Pirantel. El
Levamisol y el tetramisol son eficaces frente a las formas adultas de los
parásitos y en menor escala contra las larvas, son en general muy
eficaces contra las estrongilosis gastrointestinales y la mayoría de las
estróngilos pulmonares, que en nuestro país se reducen básicamente a
las ocasionadas por el género Dyctiocaulus. Éstos, cuando se
diagnostica una bronconeumonía verminosa, constituyen una buena
alternativa terapéutica (Levamisol, Tetramisol). En cuanto al Morantel y
el Pirantel su rango de
eficacia abarca los agentes responsables de la estrongilosis
gastrointestinal y a la
ascaridosis, pero su acción sobre los Trichostrongylus y Strongyloides
es muy irregular. En cuanto a su toxicidad, son bien tolerados y la dosis
tóxica es 5 veces superior a la dosis terapéutica en el caso del
Pyrantel y 10 veces la dosis terapéutica para el morantel. Albendazol,
Cambendazol, Ciclobendazol, Fenbendazol, Fluobendazol, Luxabendazol,
Mebendazol, Oxfendazol, Oxibendazol, Parbendazol, Ricobendazol,
Tiabendazol, Triclabendazol. La
mayoría de estos químicos poseen una adecuada actividad frente a los
nematodos, excepto el Triclabendazol, cuya actividad especifica es contra
formas larvarias y adultas de F. hepatica y es la razón por la
cual se comercializa en presentaciones que combinan un antihelmíntico de
amplio espectro contra nematodos gastroentéricos con el triclabendazol,
en general los antihelmínticos de este grupo poseen una baja toxicidad.
La administración de la mayoría de estos antihelmínticos es por vía
oral. Netobimin,
Febantel, Tiofanato. La
metabolización de estos da origen a Bencimidazoles, su mayor
efectividad es frente a las formas adultas. Algunos presentan una eficacia
limitada contra larvas inhibidas; sin embargo, otros son buenos larvicidas
y ovicidas. Algunos de ellos tienen eficacia contra parásitos bronco
pulmonares como Dicyocaulus, nematodos Strongylida tanto adultos
como inmaduros (tiofanato), contra nematodos del tubo digestivo y de las vías
respiratorias e incluso contra cestodes Anoplocephalidos
(febantel), contra nematodos, cestodos y trematodos (netobimin). Avermectinas
(Ivermectina, Doramectina) y Milbemicinas (Moxidectinas). El
grupo de las avermectinas / milbemicinas está conformado por una serie de
lactonas macrocíclicas, que son productos derivados de la fermentación
del Streptomyces avermitilis. En general están dotados de una
excelente actividad a muy bajas dosis, no sólo contra un amplio rango de
nematodos sino también contra algunos artrópodos parásitos. Estas
drogas pueden permanecer activas al menos por dos semanas después de su
administración debido a su persistencia en la grasa corporal. Constituyen
los antiparasitarios endectocidas por excelencia y permiten una eficaz
lucha terapéutica contra nematodos y artrópodos de forma simultánea.
Son eficaces frente a diversos nematodos adultos (Haemonchus spp, Oesophagostomum
spp, etc.), como contra larvas inhibidas y frente a parásitos bronco
pulmonares. Son productos de actividad prolongada y existen presentaciones
tanto para administración oral como parenteral. Por su eficacia
prolongada exigen periodos de retirada más largos que los requeridos por
otros antihelmínticos. Para las Ivermectinas, es de 28 días para la
leche y 21 días para la carne. En el caso de la Moxidectina, el periodo
de supresión para la carne es de 14 días cuando se administra oralmente
y 40 días cuando su administración es parenteral y no es recomendable
usar la leche de animales tratados con este producto. A
continuación suministramos un listado de antihelmínticos sobre la base
de sus nombres genéricos, vía de administración, dosis y espectro de
actividad. (Hansen y Perry, 1964; Carrillo, 2002).
Los
métodos de control del parasitismo gastrointestinal y muy específicamente
de la estrongilosis digestiva se basan en la reducción de las poblaciones
de parásitos, lo cual se logra mediante los tratamientos antihelmínticos
adecuados y la restricción de la reinfestación mediante la implementación
de sistemas de pastoreo que disminuyan las probabilidades de contacto
entre las formas infestantes de los parásitos y los animales del rebaño.
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editores: Comentarios a este artículo a ceniaphoy@inia.gov.ve Asunto: CH8 Helmintosis gastrointestinales de los bovinos en Venezuela. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Referencia de este artículo:
Morales, G.; Pino, L.;
Sandoval, E. y Jiménez, D.
2005. Helmintosis gastrointestinales de los bovinos en Venezuela. Revista Digital
CENIAP HOY Número 8 mayo-agosto, 2005. Maracay, Aragua, Venezuela. DERECHOS
RESERVADOS ® 2003 REVISTA DIGITAL CENIAP HOY | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||