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Agronomía Tropical 57(1): 45-50. 2007

EVALUACIÓN DE LA DIVERSIDAD GENÉTICA DE SUBESPECIES DE ARROZ USANDO MARCADORES MICROSATÉLITALES Y AFLP1              

Evaluation of genetic diversity in rice subespecies using AFLP and microsatellite markers1

 Erika Arnao*, Nohelia Rodríguez**, Patricio Hinrinsen***, Yorman Jayaro*, Catalina Ramis**** e Iris Pérez-Almeida**

1 Trabajo financiado bajo el Proyecto BID-FONACIT II (Subproyecto Nº 2004000369).
* Investigadores. Fundación para la Investigación Agrícola DANAC, San Felipe, estado Yaracuy. ** Investigadores. INIA.Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias (CENIAP). Av. Universidad, vía El Limón. Apdo. 4653. Maracay 2101, estado Aragua. Venezuela. *** Investigador. INIA), Estación La Platina, Chile.
**** Profesora. Universidad Central de Venezuela. Facultad de Agronomía.
Centro de Investigaciones en Biotecnología Agrícola.
Recibido:
septiembre 26, 2007  Aceptado: febrero 20, 2006


 RESUMEN

Los marcadores moleculares representan una herra­mienta poderosa en la evaluación de la diversidad genética y en la determinación de identidad, especialmente en varie­dades de base genética estrecha como el arroz. El objetivo de este estudio fue evaluar la diversidad­ genética de las subespecies de arroz Indica y Japónica, mediante el uso de marcadores microsatélite y AFLP. Para ello, se evaluaron­ 12 variedades­ de arroz venezolanas y 12 varie­dades chilenas­ pertene­cientes a las subespecies Indica y Japonica, respectivamente,­ con 13 marcadores micro­satélites (SSR) y 5 combina­ciones de primers AFLP. La presencia (1) y ausencia (0) de bandas­ para cada SSR y combinación de primers AFLP fue regis­trada para cada individuo y luego convertidos a matrices de similitud y distancia genética para los SSR y AFLP, respectivamente,­ a partir de la cual se construyó un cluster­ por el método UPGMA y se realizó­ el análisis de coordenadas princi­pales. Con los 13 SSR se obtuvo un total de 70 alelos, siendo el promedio de 5,64 alelos por locus, y el contenido­ de información polimórfica de 0,60. Mientras que, con las 5 combinaciones de AFLP se generaron 82 bandas,­ de las cuales 43 (51,8%) resultaron­ polimórficas. Ambos métodos de agrupamiento clasifi­caron las variedades­ en 2 grupos: el primero correspondió a las varie­dades de la subespecie Japónica (chilenas) y el segundo­ a la Indica (venezolanas).­ El grupo Japónica mostró­ menor­ diversidad­ genética que el grupo de Indica, y en general todas las varie­dades pudieron ser distinguidas.­ Los resul­tados sugieren que un pequeño­ número de marca­dores genera suficiente información para estimar diversidad­ genética entre subespecies de arroz e identificar variedades.­

 Palabras Clave: AFLP; microsatélite; Oryza sativa L.; diversidad genética.

SUMMARY 

Molecular markers represent a powerful tool for genetic diversity assessment and identity determination especially in genetic narrow based rice varieties. This study aimed to assess the genetic diversity of Indica and Japonica rice subspecies using SSR molecular markers and AFLPs. We evaluated 12 rice Venezuelan varieties (Indica) and 12 Chilean varieties (Japonica) with 13 microsatellite markers (SSR) and four AFLP primer combinations. Presence (1) and absence (0) of bands for each microsatellite (SSR) and AFLP primer combination were scored for each variety, and then converted into similarity and distance genetic matrix for SSR and AFLP, respectively, to construct a cluster­ by the UPGMA method. Also a Principal Component Analysis was performed. A total of 70 alleles were obtained from the 13 SSRs, with an average of 5,64 alleles per locus, and a polymorphic information content of 0,60. A total of 82 bands were generated from four AFLPs combinations, from which 43 (51,8%) resulted polymorphic. Both grouping methods classified the varieties in two groups: first one corresponded to the Japonica subspecies varieties (Chilean) and the second to the indica subspecies varieties (Venezuelan). Japonica group showed a higher genetic diversity than the Indica group, and in general all varieties could be differentiated. Our results suggest that a small number of markers can generate enough amount of information useful to estimate genetic diversity between rice subspecies and to identify varieties.

 Key Words: AFLPs; microsatellites; Oryza sativa L.; genetic diversity.

 INTRODUCCIÓN

 La colección mundial de germoplasma de arroz silvestre­ y cultivado ha hecho una gran contribución en el mejora­miento de este cultivo. La especie de arroz, Oryza sativa esta compuesta por dos subespecies: Indica y Japónica (Oka, 1998). Indica es una subespecie predominan­temente tropical, y Japónica constituye una subespecie de tipo tropical y templado, ampliamente sembrada al este de Asia, norte y sur de América, Australia, Norte medite­rráneo de África y Europa, representando alre­dedor del 20% de la producción mundial de arroz (Mackill, 1995).

 El cruce entre diferentes subespecies frecuentemente resulta­ en problemas de esterilidad en los híbridos y sus progenies, ruptura de los bloques de ligamiento y de combi­naciones de genes favorables, y arrastre genético (Ikehashi y Araki, 1986). La reducida recombinación y la distorsión en la segregación resultante de hibridaciones amplias pueden ocasionar dificultad en la selección de recombinantes deseables durante el proceso­ de mejoramiento, por ello los mejoradores gene­ralmente usan líneas­ dentro de la misma subespecie o grupo para realizar­ los cruces.

Gracias al uso de la biotecnología se han abierto mucho más las posibilidades de realizar cruces intra e interespe­cíficos, y con los marcadores mole­culares muchas de las dificultades mencionadas para la hibridación han sido solucionadas. Sin embargo­, para la aplicación de selección­ asistida por marcadores moleculares dentro de una subespecie es importante obtener información de la diversidad genética dentro de las subespecies de arroz (Temnykh et al., 2000). El presente estudio­ tiene como objetivo evaluar la diversidad genética de las subespecies de arroz Indica y Japónica, mediante­ el uso de marca­dores­ moleculares del tipo microsatélite y AFLP.

 MATERIALES Y MÉTODOS

 Material Vegetal

 Se utilizaron 12 variedades de arroz venezolanas pertenecientes a la subespecie Indica y 12 variedades de arroz chilenas subespecie Japónica (Cuadro 1). La evaluación molecular de los 24 mate­riales con los marca­dores SSR y AFLP se llevó a cabo en el Laboratorio de Biotecnología del INIA-Chile y en el Laboratorio de Biología­ Molecular de Fundación DANAC.

 Extracción del ADN

Se realizó siguiendo la metodología de extracción con CTAB (2%) descrita por Dellaporta et al. (1983) con  modificaciones menores. La calidad y cantidad del ADN se verificó en geles de agarosa al 0,8% utilizando como referencia ADN del bacteriófago Lambda. La concentración de ADN se ajustó a 25 ng µl-1 con agua ultrapura.  

 

Cuadro 1. Variedades de arroz de Chile y Venezuela correspondientes a las subes­pecies Japónica e Indica, respectivamente.

Variedades chilenas
(Japónica)  
 Variedades venezolanas
    (Indica)

1. Cristal  13. D-Oryza
2. Oro  14. D-Sativa
3. Quita  15. D-Primera
4. CINIA 609 16. Araure 4
5. CINIA 606 17. Cimarrón
6. CINIA 242 18. Fundarroz PN-1
7. CINIA 669   19. Fonaiap 1
8. Brillante   20. Fonaiap 2000
9. Buli  21. Araure 50
10. Perla   22. Palmar
11. Diamante  23. Araure 1
 12. Turson  24. Venezuela 21

Evaluación de los SSR 

En los 24 materiales de arroz se evaluaron 13 marca­dores microsatélites, distribuidos en 11 de los 12 cromosomas del arroz, denominados: RM222, RM541, RM144, RM219, RM551, RM547, RM440, RM11, RM185, RM336, RM415, RM545, RM580. La amplificación del ADN vía reacción en cadena de la polimerasa (PCR) se realizó en un volumen final de 20 µl usando: 2 µl ADN, 2 µl de buffer (10x), 2 µl MgCl2 (25 mM), 1,3 µl de dNTPs (2,5 mM), 2 µl Primer­ R y F (5 mM) y 0,5 µl de Taq polimerasa.

Los perfiles de temperatura fueron los siguientes: 94 ºC por 5 min, seguido por 34 ciclos a 94 ºC por 45 seg; 56 ºC por 2 min y 72 ºC por 15 seg. Finalmente un ciclo de extensión final a 72 ºC por 5 min. Los productos ampli­ficados fueron separados por electroforesis en geles de poliacrilamida al 6% y teñidos con nitrato de plata usando el kit Promega (SILVER SECUENCE™).

Evaluación de los AFLP

El análisis con marcadores AFLP se desarrolló según­ el protocolo de Vos et al. (1995) con pocas modifica­ciones y constó de los siguientes pasos: digestión del ADN, liga­ción de los adaptadores, amplificación preselectiva, ampli­ficación selectiva y separación de los fragmentos. Para la digestión del ADN genómico se usó la combi­nación de las endonucleasas de restricción EcoRI/MseI.

Los primers usados para la amplificación prese­lectiva tenían las siguientes secuencias: EcoRI + n: 5´GAC TGC GTA CCA ATT C 3´ y MseI + n: 5´GAT GAG TCC TGA GTA A 3´ y los perfiles de temperatura para la ampli­fi­cación fueron los siguientes: 94 ºC por 2 min seguido­ de 20 ciclos repetitivos de 94 ºC por 30 seg, 55 ºC por 1 min y 72 ºC por 1 min con una extensión final de 75 ºC por 5 min. Los productos­ amplificados fueron diluidos­ 1/100 para realizar la amplificación selectiva.

En el caso de la amplificación selectiva se usaron 5 combi­na­ciones de primers los cuales tenían la misma secuencia­ que los usados para la amplificación prese­lectiva más 3 nucleótidos selectivos: E: AAC y M: GAT; E: AAC y M: GAC; E: ATC y M: GCA; E: AAC y M: GAC y E: AAT y M:GCA. Los perfiles de temperatura en este paso fueron­ los siguientes­: 94 ºC por 4 min seguido­ de 12 ciclos de 94 ºC por 30 seg, 65 ºC por 30 seg (disminu­yendo 0,7 ºC por ciclo hasta llegar a 56 ºC) y 72 ºC por 1 min. Luego 26 ciclos de 94 ºC por 30 seg, 56 ºC por 30 seg y 72 ºC por 1 min. Finalizando con una extensión de 72 ºC por 5 min. La separación de los fragmentos y tinción fue similar a la realizada para los SSR.

Análisis estadístico

Las bandas polimórficas para los marcadores SSR y AFLP fueron genotipadas manualmente como un código­ binario con “1” para presencia y “0” para ausencia. Las bandas monomórficas no fueron consi­deradas. Las asocia­ciones entre las subespecies (Indica y Japónica) fueron evaluadas usando los coefi­cientes de similitud de Dice y de distancia genética de Nei para los AFLP y SSR, respec­tivamente. Las matrices fueron sujetas al análisis de cluster­ empleando el método de agrupamiento por pares no ponderadas usando la media aritmética (UPGMA) propor­cionado por el programa NTSYSpc, versión 2,1 (Exeter Software Co., New York).

En el caso de los microsatélites se realizó también el análisis de coordenadas principales, se contabilizó el número­ de alelos para cada marcador y se determinó el contenido­ de información polimórfica (PIC) usando la fórmula 1- Spi2, donde pi corresponde a la frecuencia­ alélica (Powell et al., 1996).

 RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Los 13 SSR generaron un total de 70 alelos, siendo­ el promedio de 5,64 alelos por locus, y el contenido­ de infor­mación polimórfica de 0,60 (Cuadro 2). Por su parte­, las 5 combinaciones de AFLP se gene­raron 82 bandas, de las cuales 43 (51,8%) resul­taron polimórficas.

Cuadro 2. SSR evaluados en los materiales de arroz: nombre, ubicación en el cromo­soma, alelos obtenidos y contenido de infor­mación polimórfica (PIC).  

    Primer   Cromosoma   Alelos   Genotipos PIC

1   RM 580   1 5 24 0,71
2   RM 545   3 3 24 0,56
3 RM 185   4 1 24 0
4 RM 551        4 7 24 0,75
5 RM 440    5 8 23 0,84
6 RM 541 6 7 20 0,81
7 RM 11 7 3 24 0,7
8 RM 336 7 9 24 0,8
9 RM 547 8 6 22 0,71
10 RM 219    9 4 24 0,58
11 RM 222  10 5 24 0,56
12 RM 144     11 13 22 0,89
13 RM 415 12 1 24 0

Total promedio 72
5,53

0,60

 Con ambos marcadores moleculares (SSR y AFLP) se obtuvo suficiente polimorfismo para diferenciar claramente las dos subespecies. La Figura 1 muestra­ los dendrogramas obtenidos con ambos tipos de marcadores­ y la Figura 2 el gráfico de coor­denadas principales para los SSR. En ambas figuras­ se aprecia una clara diferenciación de las varie­dades en dos grupos, correspon­dientes­ a cada una de las subespecies.

En el dendrograma generado con la distancia gené­tica de Nei se aprecia que la máxima distancia entre­ las varie­dades Japónica es de aproximadamente­ 0,57, mientras que para las variedades Indica este valor es cercano a 0,90, lo cual indica una mayor diversidad dentro de las variedades de esta última subespecie. Este hecho coincide­ con estudios previos­ (Mackill et al., 1995; Zhang et al., 1992). Aguirre et al. (2005), hacen referencia a la alta homo­geneidad genética de las variedades­ chilenas de arroz, debido a un reducido número de progenitores­ (5 a 6) con un amplio aporte en el genoma de las mismas.

 

 

Las variedades Indica liberadas en Venezuela presentan­ una mayor diversidad respecto al número­ de progeni­tores que intervienen en su constitución. El Cuadro 3 presenta los progenitores con un aporte mayor al 3% del genoma de algunas de las variedades incluidas en el estudio,­ elaborado a partir de la genealogía de las variedades obtenidas en la base de datos International Rice Information System, IRIS (IRRI, 2006). Aún cuando la mayor parte de los progenitores provienen de Asia, parecen­ aportar una mayor diversidad, tal como le reflejan­ las Figuras 1 y 2.

 

.Figura 2. Coordenadas principales obtenidas con los 13 marcadores microsatélites. El círculo de la izquierda corresponde a las variedades Indica (venezolanas) y el círculo de la dere­cha a las variedades Japónica (chilenas).
Figura 2. Coordenadas principales obtenidas con los 13 marcadores microsatélites. El círculo de la izquierda corresponde a las variedades Indica (venezolanas) y el círculo de la dere­cha a las variedades Japónica (chilenas).  

 En el dendrograma generado a partir del coeficiente­ de similitud de Nei puede apreciarse que 2 grupos­ de varie­dades conformados por Araure 4 y Fonaiap 1 en uno, y Cimarrón, Araure 1 y Palmar en otro, muestran­ las mayores­ similitudes. Este grupo­ de varie­dades, se carac­terizan por recibir un aporte impor­tante de los progenitores Cina, Latisail y Dee Geo Woo Gen, el cual supera en conjunto el 25% de la constitución genómica de dichas­ variedades (Cuadro 3).

Este aporte se debe a que dichas variedades son a su vez progenitoras de IR8, cultivar emblema de la revolución verde que fue ampliamente utilizado en cruzamientos a escala mundial, luego de su impacto a partir de la década­ de 1970.

La variedad Fundarroz PN1 posee un menor aporte­ de estos progenitores (Cuadro 3), lo cual pudiese ser una causa de su menor similitud respecto al resto de las varie­dades. Este hecho pareciera ser un indicio de que las variedades tradicionales vene­zolanas o con mayor tiempo­ en el mercado poseen un considerable aporte de los proge­nitores de IR8, mientras que variedades más recientes pudiesen haber disminuido la contribución de esta fuente,­ debido a la incorporación de nuevos proge­nitores. No obstante, son necesarios estudios de la genea­logía de las variedades recientes para confirmar este hecho.

Dos marcadores SSR resultaron ideales para dife­renciar­ las 2 subespecies, ya que los cultivares Indica­ presentaron­ alelos que estaban ausentes en los culti­vares Japónicas y viceversa.

   

Cuadro 3. Aporte de los principales progenitores a algunas variedades de arroz Indica.  


Progenitores     Cimarrón  Araure 1 Palmar Araure 4      Fonaiap 1   Fundarroz PN1   Origen  

Cina 16,41 6,25 10,94 17,19 7,42 5,91 Indonesia
Latisail 16,41 6,25 10,94 20,31 7,42 6,10 India
Dee Geo Woo Gen 9,38 12,50 14,06 14,06 12,50 9,86 Taiwan
Tadukan 18,75 - 12,50 12,50 - 3,52 Filipinas
Ai Jiao Gen 12,50 - - - - - Taiwan
TK M6 6,25 - - - - - India
IR 1737 6,25 - - - - IRRI, Filipinas
IR 1561 6,25 - - - - - IRRI, Filipinas 
Gampai-15 - - - - - - Tailandia
IR 12 - 25,00 12,50 12,50 9,38 4,10 IRRI, Filipinas
Rexoro - 6,25 - - - - estados Unidos
Fortuna - 6,25 - - - - ?
Palmira 105 - 12,50 - - 3,13 - Costa Rica
Takao IKU 18 - 25,00 6,25 6,25 6,25 4,10 Taiwan
Tetep - - 6,25 6,25 3,13 - Vietnam
Napal - - 6,25 6,25 - 4,10 ?
Syntha - - 12,50 - - - ?
Tangkai Rotan - - 6,25 - - - Malasia
Bayang - - - 3,13 12,50 - Indonesia
SML 80-5 - - - - 12,50 - Surinan
SML 81-A - - - - 12,50 - Surinan
SML 1010 - - - - 6,25 - Surinan
Apura - - - - - - Surinan
B5580A - - - - - 3,13

Estados Unidos

Tox 494 - - - - - 6,25 Nigeria
Suakoko - - - - - 3,13 Nigeria

Nota: Los aportes de cada progenitor se presentan en porcentajes. Se muestran en la tabla sólo aquellos progenitores con un aporte mayor al 3 % del genoma de las variedades.  

El marcador RM222 presentó 5 alelos en los 24 mate­riales de arroz de los cuales uno estuvo presente­ en todos­ los Japónica y ausentes en los Indica. Con el marcador­ RM219 se visualizaron 5 alelos, de los cuales 2 fueron exclusivos de las variedades Japónica y dos de las Indica.

Algunos de los SSR presentaron alelos únicos que permitieron­ la identificación de variedades. Por ejemplo,­ los alelos 4 y 5 del SSR 222 diferenciaron las variedades­ Cimarrón y Fonaiap 2000, respectivamente.

El Cuadro 4 muestra la información de los alelos de algunos­ SSR que fueron específicos para algunas­ de las variedades.

En el caso de los AFLP sólo las combinaciones de primers selectivos: E: AAC y M: GAT, y E: AAT y M: GCA presentaron alelos diferenciales para las subes­pecies. Ninguna­ de las combinaciones presentó­ alelos únicos para las variedades.

   

CUADRO 4. SSR evaluadosen los materiales de arroz que presentaron alelos únicos para la identificaciòn de variedade

  Marcador        Alelo      Pb    Variedad  

RM222       Alelo 4 235 Cimarrón
Alelo 5    240 Fonaiap 2000
Alelo 2  248 Oro
RM551  Alelo 5  230 Diamante
Alelo 7  245 D-Primera
RM547  Alelo 5    173 Perla
RM219    Alelo 5 254 Fundarroz-NP1
Alelo 6 250 D-Primera
RM440 Alelo 5 145 PN1
Alelo 7 130 D-Primera
RM336 Alelo 3  200 Quila
Alelo 7   245 D-Primera
Alelo 8    140 Araure 50
RM580      Alelo 3   210 D-Oryza

BIBLIOGRAFÍA

Aguirre, C., R. Alvarado y P. Hinrichsen. 2005. Identificación de cultivares y líneas de mejora­miento de arroz de Chile mediante amplificación de fragmentos­ polimórficos(AFLP). Agricultura Técnica­ (Chile)­ 65(4):356-369.  

Dellaporta, S., T. Word  and T. Hicks. 1983. A plant DNA minipreparation: version ii. Plant Mol. Rep. 1:19-21  

Ikehashi H., and H. H. Araki. 1986. Genetics of F1 sterility in rice. In: Rice genetics. International Rice Research Institute, los Baños, The Phili­ppines. p. 119-132  

International Rice Research Institute. (Revisado 29 noviembre­ 2006). International Rice Information System IRIS [En línea] http://www.iris.irri.org/  

Mackill, D. J. 1995. Classifying japonica rice cultivars with RAPD markers. Crop Sci. 35:889-894.  

Oka, H. I. 1988. Origin of cultivated rice. Elsevier, Tokyo.  

Powell, W., M. Morgante, C. Andre, M. Hanafey, J. Vogel, S. Tingey and A. Fafalski. 1996. The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germplasm analysis. Mol. Breeding 2:225-238.  

Temnykh, S., W. D. Park, N. Ayres, S. Cartinhour, N. Hauck, L. Lipovich, Y. G. Cho, T. Ishii and S. R. Mccouch. 2000. Mapping and one organization of microsatellite sequences in rice (Oryza sativa L.). Theor. Appl.Genet. 100:697-712.  

Vos, P., R. Hogers, M. Bleeker, M. Reijans, T. Van De Lee, M. Hornes, A. Fritjers, J. Pot, J. Peleman, M. Kuiper and M. Zabeau. 1995. AFLP: a new concept to ADN fingerprintin. Nucleic Acids Res. 23:4.407-4.414.  

Zhang, Q. F., M. A. S. Maroof, T. Y. Lu and B. Z. Shen. 1992. Genetic diversity and differentiation of Indica­ and Japónica rice detected by RFLP analysis. Theor. Appl. Genet. 83:495-499.


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